• facebook
  • Linkedin
  • youtube
page_banner

ДНК-полімераза Foreasy Taq

Опис набору:

Висока специфічність: фермент має певну активність гарячого старту.

Швидке посилення: 10 с/кб.

Високо адаптивний шаблон: може використовуватися для ефективної ампліфікації GC Високого значення, різних шаблонів ДНК, які важко ампліфікувати.

Сильна точність: звичайний фермент Taq 6 разів.

Висока термічна стабільність: його можна помістити при 37 °C протягом тижня та підтримує понад 90% активності.

чужа сила


Деталі продукту

Теги товарів

FAQ

опис

ДНК-полімераза Foreasy Taq — це новий фермент Taq, який експресується в бактеріях Escherichia coli за допомогою технології рекомбінації генів.Сам фермент має певну активність гарячого старту і може бути використаний для звичайної ПЛР та кПЦР;він має 5'→3' ДНК-полімеразну активність і 5'→3' екзонуклеазну активність, але не має 3'→5' екзонуклеазної активності.

Компоненти набору

компонент

ІМ-01011 ІМ-01012 ІМ-01013
ДНК-полімераза Foreasy Taq(5 Од/мкл)  5000 ОД (1 мл)  50 KU (10 мл)  500 KU (100 мл)
2 × буфер реакції Taq  25 мл × 5  250 мл × 5  500 мл × 25

Особливості та переваги

- Висока специфічність: фермент має певну активність гарячого старту.

- Швидке посилення: 10 с/кб.

- Високо адаптивний шаблон: може використовуватися для ефективної ампліфікації GC Високого значення, різних шаблонів ДНК, які важко ампліфікувати.

- Сильна точність: звичайний фермент Taq 6 разів.

- Висока термічна стабільність: його можна помістити при 37 °C протягом тижня та підтримує понад 90% активності

Аплікація комплекту

Різні системи ПЛР/кПЦР і системи прямої ПЛР

ПЛР-ампліфікація фрагментів ДНК

Маркування ДНК

Секвенування ДНК

ПЛР А-хвіст

U Визначення

1U: кількість ферменту, необхідного для включення 10 нмоль дезоксинуклеотидів у нерозчинну в кислоті речовину з використанням активованої ДНК сперми лосося як матриці/праймера протягом 30 хвилин при 74°C.

Умова реакції

Температура час Цикл
37°C 5 хв 1
94°C 5 хв 1
94°C 10 сек  

35

60°C 10 сек
72°C 20 сек/кб
72°C 2 хв 1

Зберігання

-20 ± 5 °C протягом 2 років або при -80 °C для тривалого зберігання.


  • Попередній:
  • далі:

  • Немає сигналів посилення

    1. ДНК-полімераза Taq у наборі втрачає свою активність через неправильне зберігання або закінчення терміну придатності набору.
    Рекомендація: Перевірте умови зберігання набору;повторно додайте відповідну кількість ДНК-полімерази Taq до системи ПЛР або придбайте новий набір для ПЛР у реальному часі для відповідних експериментів.

    2. Є багато інгібіторів Taq ДНК-полімерази в матриці ДНК.
    Пропозиція: повторно очистіть шаблон або зменшіть його кількість.

    3. Концентрація Mg2+ не підходить.
    Рекомендація: Концентрація Mg2+ у суміші 2× Real PCR Mix, яку ми надаємо, становить 3,5 мМ.Однак для деяких спеціальних праймерів і шаблонів концентрація Mg2+ може бути вищою.Таким чином, ви можете безпосередньо додати MgCl2 для оптимізації концентрації Mg2+.Для оптимізації рекомендується щоразу збільшувати Mg2+ на 0,5 мМ.

    4. Умови ПЛР-ампліфікації невідповідні, а послідовність або концентрація праймера невідповідна.
    Пропозиція: підтвердьте правильність послідовності праймерів і праймер не був деградований;якщо сигнал посилення поганий, спробуйте знизити температуру відпалу та відповідним чином відрегулювати концентрацію праймера.

    5. Обсяг шаблону занадто малий або забагато.
    Рекомендація: виконайте градієнтне розведення лінеаризації шаблону та виберіть концентрацію шаблону з найкращим ефектом ПЛР для експерименту ПЛР у реальному часі.

    NTC має занадто високе значення флуоресценції

    1. Забруднення реагентом під час роботи.
    Рекомендація: замініть на нові реагенти для експериментів ПЛР у реальному часі.

    2. Зараження відбулося під час підготовки реакційної системи ПЛР.
    Рекомендація: вживайте необхідних заходів захисту під час роботи, таких як: носіння латексних рукавичок, використання наконечника піпетки з фільтром тощо.

    3. Праймери руйнуються, і руйнування праймерів спричинить неспецифічну ампліфікацію.
    Пропозиція: використовуйте електрофорез SDS-PAGE, щоб виявити, чи праймери деградували, і замініть їх новими праймерами для експериментів ПЛР у реальному часі.

    Праймерний димер або неспецифічна ампліфікація

    1. Концентрація Mg2+ не підходить.
    Рекомендація: Концентрація Mg2+ у суміші 2× Real PCR EasyTM Mix, яку ми надаємо, становить 3,5 мМ.Однак для деяких спеціальних праймерів і шаблонів концентрація Mg2+ може бути вищою.Таким чином, ви можете безпосередньо додати MgCl2 для оптимізації концентрації Mg2+.Для оптимізації рекомендується щоразу збільшувати Mg2+ на 0,5 мМ.

    2. Температура відпалу ПЛР занадто низька.
    Пропозиція: щоразу підвищуйте температуру відпалу ПЛР на 1 ℃ або 2 ℃.

    3. Продукт ПЛР занадто довгий.
    Рекомендація: довжина продукту ПЛР у реальному часі має становити 100-150 bp, але не більше 500 bp.

    4. Праймери деградують, і деградація праймерів призведе до появи специфічної ампліфікації.
    Пропозиція: використовуйте електрофорез SDS-PAGE, щоб виявити, чи праймери деградували, і замініть їх новими праймерами для експериментів ПЛР у реальному часі.

    5. Система ПЛР неналежна, або система замала.
    Порада: занадто мала реакційна система ПЛР призведе до зниження точності визначення.Найкраще використовувати реакційну систему, рекомендовану приладом для кількісної ПЛР, для повторного проведення експерименту з ПЛР у реальному часі.

    Погана повторюваність кількісних значень

    1. Прилад несправний.
    Пропозиція: між кожним ПЛР-отвором приладу можуть бути помилки, що призводить до поганої відтворюваності під час керування температурою або виявлення.Будь ласка, перевірте відповідно до інструкцій відповідного приладу.

    2. Чистота зразка погана.
    Рекомендація: нечисті зразки призведуть до поганої відтворюваності експерименту, що включає чистоту шаблону та праймерів.Найкраще повторно очистити шаблон, а праймери найкраще очищати SDS-PAGE.

    3. Час підготовки та зберігання ПЛР-системи надто довгий.
    Порада: використовуйте систему ПЛР у реальному часі для ПЛР-експерименту одразу після підготовки та не залишайте її надовго.

    4. Умови ПЛР-ампліфікації невідповідні, а послідовність або концентрація праймера невідповідна.
    Пропозиція: підтвердьте правильність послідовності праймерів і праймер не був деградований;якщо сигнал посилення поганий, спробуйте знизити температуру відпалу та відповідним чином відрегулювати концентрацію праймера.

    5. Система ПЛР неналежна, або система замала.
    Порада: занадто мала реакційна система ПЛР призведе до зниження точності визначення.Найкраще використовувати реакційну систему, рекомендовану приладом для кількісної ПЛР, для повторного проведення експерименту з ПЛР у реальному часі.

    Напишіть своє повідомлення тут і надішліть його нам