ДНК-полімераза Foreasy Taq
опис
ДНК-полімераза Foreasy Taq — це новий фермент Taq, який експресується в бактеріях Escherichia coli за допомогою технології рекомбінації генів.Сам фермент має певну активність гарячого старту і може бути використаний для звичайної ПЛР та кПЦР;він має 5'→3' ДНК-полімеразну активність і 5'→3' екзонуклеазну активність, але не має 3'→5' екзонуклеазної активності.
Компоненти набору
компонент | ІМ-01011 | ІМ-01012 | ІМ-01013 |
ДНК-полімераза Foreasy Taq(5 Од/мкл) | 5000 ОД (1 мл) | 50 KU (10 мл) | 500 KU (100 мл) |
2 × буфер реакції Taq | 25 мл × 5 | 250 мл × 5 | 500 мл × 25 |
Особливості та переваги
- Висока специфічність: фермент має певну активність гарячого старту.
- Швидке посилення: 10 с/кб.
- Високо адаптивний шаблон: може використовуватися для ефективної ампліфікації GC Високого значення, різних шаблонів ДНК, які важко ампліфікувати.
- Сильна точність: звичайний фермент Taq 6 разів.
- Висока термічна стабільність: його можна помістити при 37 °C протягом тижня та підтримує понад 90% активності
Аплікація комплекту
Різні системи ПЛР/кПЦР і системи прямої ПЛР
ПЛР-ампліфікація фрагментів ДНК
Маркування ДНК
Секвенування ДНК
ПЛР А-хвіст
U Визначення
1U: кількість ферменту, необхідного для включення 10 нмоль дезоксинуклеотидів у нерозчинну в кислоті речовину з використанням активованої ДНК сперми лосося як матриці/праймера протягом 30 хвилин при 74°C.
Умова реакції
Температура | час | Цикл |
37°C | 5 хв | 1 |
94°C | 5 хв | 1 |
94°C | 10 сек | 35 |
60°C | 10 сек | |
72°C | 20 сек/кб | |
72°C | 2 хв | 1 |
Зберігання
-20 ± 5 °C протягом 2 років або при -80 °C для тривалого зберігання.
Немає сигналів посилення
1. ДНК-полімераза Taq у наборі втрачає свою активність через неправильне зберігання або закінчення терміну придатності набору.
Рекомендація: Перевірте умови зберігання набору;повторно додайте відповідну кількість ДНК-полімерази Taq до системи ПЛР або придбайте новий набір для ПЛР у реальному часі для відповідних експериментів.
2. Є багато інгібіторів Taq ДНК-полімерази в матриці ДНК.
Пропозиція: повторно очистіть шаблон або зменшіть його кількість.
3. Концентрація Mg2+ не підходить.
Рекомендація: Концентрація Mg2+ у суміші 2× Real PCR Mix, яку ми надаємо, становить 3,5 мМ.Однак для деяких спеціальних праймерів і шаблонів концентрація Mg2+ може бути вищою.Таким чином, ви можете безпосередньо додати MgCl2 для оптимізації концентрації Mg2+.Для оптимізації рекомендується щоразу збільшувати Mg2+ на 0,5 мМ.
4. Умови ПЛР-ампліфікації невідповідні, а послідовність або концентрація праймера невідповідна.
Пропозиція: підтвердьте правильність послідовності праймерів і праймер не був деградований;якщо сигнал посилення поганий, спробуйте знизити температуру відпалу та відповідним чином відрегулювати концентрацію праймера.
5. Обсяг шаблону занадто малий або забагато.
Рекомендація: виконайте градієнтне розведення лінеаризації шаблону та виберіть концентрацію шаблону з найкращим ефектом ПЛР для експерименту ПЛР у реальному часі.
NTC має занадто високе значення флуоресценції
1. Забруднення реагентом під час роботи.
Рекомендація: замініть на нові реагенти для експериментів ПЛР у реальному часі.
2. Зараження відбулося під час підготовки реакційної системи ПЛР.
Рекомендація: вживайте необхідних заходів захисту під час роботи, таких як: носіння латексних рукавичок, використання наконечника піпетки з фільтром тощо.
3. Праймери руйнуються, і руйнування праймерів спричинить неспецифічну ампліфікацію.
Пропозиція: використовуйте електрофорез SDS-PAGE, щоб виявити, чи праймери деградували, і замініть їх новими праймерами для експериментів ПЛР у реальному часі.
Праймерний димер або неспецифічна ампліфікація
1. Концентрація Mg2+ не підходить.
Рекомендація: Концентрація Mg2+ у суміші 2× Real PCR EasyTM Mix, яку ми надаємо, становить 3,5 мМ.Однак для деяких спеціальних праймерів і шаблонів концентрація Mg2+ може бути вищою.Таким чином, ви можете безпосередньо додати MgCl2 для оптимізації концентрації Mg2+.Для оптимізації рекомендується щоразу збільшувати Mg2+ на 0,5 мМ.
2. Температура відпалу ПЛР занадто низька.
Пропозиція: щоразу підвищуйте температуру відпалу ПЛР на 1 ℃ або 2 ℃.
3. Продукт ПЛР занадто довгий.
Рекомендація: довжина продукту ПЛР у реальному часі має становити 100-150 bp, але не більше 500 bp.
4. Праймери деградують, і деградація праймерів призведе до появи специфічної ампліфікації.
Пропозиція: використовуйте електрофорез SDS-PAGE, щоб виявити, чи праймери деградували, і замініть їх новими праймерами для експериментів ПЛР у реальному часі.
5. Система ПЛР неналежна, або система замала.
Порада: занадто мала реакційна система ПЛР призведе до зниження точності визначення.Найкраще використовувати реакційну систему, рекомендовану приладом для кількісної ПЛР, для повторного проведення експерименту з ПЛР у реальному часі.
Погана повторюваність кількісних значень
1. Прилад несправний.
Пропозиція: між кожним ПЛР-отвором приладу можуть бути помилки, що призводить до поганої відтворюваності під час керування температурою або виявлення.Будь ласка, перевірте відповідно до інструкцій відповідного приладу.
2. Чистота зразка погана.
Рекомендація: нечисті зразки призведуть до поганої відтворюваності експерименту, що включає чистоту шаблону та праймерів.Найкраще повторно очистити шаблон, а праймери найкраще очищати SDS-PAGE.
3. Час підготовки та зберігання ПЛР-системи надто довгий.
Порада: використовуйте систему ПЛР у реальному часі для ПЛР-експерименту одразу після підготовки та не залишайте її надовго.
4. Умови ПЛР-ампліфікації невідповідні, а послідовність або концентрація праймера невідповідна.
Пропозиція: підтвердьте правильність послідовності праймерів і праймер не був деградований;якщо сигнал посилення поганий, спробуйте знизити температуру відпалу та відповідним чином відрегулювати концентрацію праймера.
5. Система ПЛР неналежна, або система замала.
Порада: занадто мала реакційна система ПЛР призведе до зниження точності визначення.Найкраще використовувати реакційну систему, рекомендовану приладом для кількісної ПЛР, для повторного проведення експерименту з ПЛР у реальному часі.